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瓊脂糖凝膠電泳原理及操作流程
  • 發(fā)布日期:2020-09-09      瀏覽次數(shù):1533
    • 原理:

      瓊脂糖凝膠電泳的分析原理與其他支持物電泳主要區(qū)別是:它兼有“分子篩”和“電泳”的雙重作用。

      瓊脂糖凝膠具有網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),物質(zhì)分子通過時會受到阻力,大分子物質(zhì)在涌動時受到的阻力大,因此在凝膠電泳中,帶電顆粒的分離不僅取決于凈電荷的性質(zhì)和數(shù)量,而且還取決于分子大小,這就大大提高了分辨能力。但由于其孔徑相比于蛋白質(zhì)太大,對大多數(shù)蛋白質(zhì)來說其分子篩效應(yīng)微不足道,現(xiàn)廣泛應(yīng)用于核酸的研究中。

      蛋白質(zhì)和核酸會根據(jù)pH不同帶有不同電荷,在電場中受力大小不同,因此跑的速度不同,根據(jù)這個原理可將其分開。電泳緩沖液的pH在6~9之間,離子強(qiáng)度0.02~0.05為適。常用1%的瓊脂糖作為電泳支持物。瓊脂糖凝膠約可區(qū)分相差100bp的DNA pian段,其分辨率雖比聚丙烯酰胺凝膠低,但它制備容易,分離范圍廣。普通瓊脂糖凝膠分離DNA的范圍為0.2-20kb,利用脈沖電泳,可分離高達(dá)10^7bp的DNA pian段。

      DNA分子在瓊脂糖凝膠中泳動時有電荷效應(yīng)和分子篩效應(yīng)。DNA分子在高于等電點的pH溶液中帶負(fù)電荷,在電場中向正極移動。由于糖-磷酸骨架在結(jié)構(gòu)上的重復(fù)性質(zhì),相同數(shù)量的雙鏈DNA幾乎具有等量的凈電荷,因此它們能以同樣的速率向正極方向移動。

       

      操作流程:

      1.準(zhǔn)備干凈的配膠板和電泳槽

      注意DNA酶污染的儀器可能會降解DNA,造成條帶信號弱、模糊甚至缺失的現(xiàn)象。

      2.電泳方法

      一般的核酸檢測只需要瓊脂糖凝膠電泳就可以;如果需要分辨率高的電泳,特別是只有幾個bp的差別應(yīng)該選擇聚丙烯酰胺凝膠電泳;用普通電泳不合適的巨大DNA鏈應(yīng)該使用脈沖凝膠電泳。注意巨大的DNA鏈用普通電泳可能跑不出膠孔導(dǎo)致缺帶。

      3.凝膠濃度

      對于瓊脂糖凝膠電泳,濃度通常在0.5~2%之間,低濃度的用來進(jìn)行大片段核酸的電泳,高濃度的用來進(jìn)行小片段分析。低濃度膠易碎,小心操作和使用質(zhì)量好的瓊脂糖是解決辦法。注意高濃度的膠可能使分子大小相近的DNA帶不易分辨,造成條帶缺失現(xiàn)象。

      4.緩沖液

      常用的緩沖液有TAE和TBE,而TBE比TAE有著更好的緩沖能力。電泳時使用新制的緩沖液可以明顯提高電泳效果。注意電泳緩沖液多次使用后,離子強(qiáng)度降低,pH值上升,緩沖性能下降,可能使DNA電泳產(chǎn)生條帶模糊和不規(guī)則的DNA帶遷移的現(xiàn)象。

      5.電壓和溫度

      電泳時電場強(qiáng)度不應(yīng)該超過20V/cm,電泳溫度應(yīng)該低于30℃,對于巨大的DNA電泳,溫度應(yīng)該低于15℃。注意如果電泳時電壓和溫度過高,可能導(dǎo)致出現(xiàn)條帶模糊和不規(guī)則的DNA帶遷移的現(xiàn)象。特別是電壓太大可能導(dǎo)致小片段跑出膠而出現(xiàn)缺帶現(xiàn)象

      6.DNA樣品的純度和狀態(tài)

      注意樣品中含鹽量太高和含雜質(zhì)蛋白均可以產(chǎn)生條帶模糊和條帶缺失的現(xiàn)象。乙醇沉淀可以去除多余的鹽,用酚可以去除蛋白。注意變性的DNA樣品可能導(dǎo)致條帶模糊和缺失,也可能出現(xiàn)不規(guī)則的DNA條帶遷移。在上樣前不要對DNA樣品加熱,用20mM NaCl緩沖液稀釋可以防止DNA變性。

      7.DNA的上樣

      正確的DNA上樣量是條帶清晰的保證。注意太多的DNA上樣量可能導(dǎo)致DNA帶型模糊,而太小的DNA上樣量則導(dǎo)致帶信號弱甚至缺失。

      8.Marker的選擇

      DNA電泳一定要使用DNA Marker或已知大小的正對照DNA來估計DNA pian段大小。Marker應(yīng)該選擇在目標(biāo)片段大小附近ladder較密的,這樣對目標(biāo)片段大小的估計才比較準(zhǔn)確。需要注意的是Marker的電泳同樣也要符合DNA電泳的操作標(biāo)準(zhǔn)。如果選擇λDNA/HindIII或者λDNA/EcoRI的酶切Marker,需要預(yù)先65℃加熱5min,冰上冷卻后使用。從而避免HindIII或EcoRI酶切造成的粘性接頭導(dǎo)致的片段連接不規(guī)則或條帶信號弱等現(xiàn)象。

      9.凝膠的染色和觀察

      實驗室常用的核酸染色劑是溴化乙錠(EB),染色效果好,操作方便,但是穩(wěn)定性差,具有毒性。注意觀察凝膠時應(yīng)根據(jù)染料不同使用合適的光源和激發(fā)波長,如果激發(fā)波長不對,條帶則不易觀察,出現(xiàn)條帶模糊的現(xiàn)象。

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